2.43
1,65
1,98
0,73
1,88
1,81
2.43
2.2 Standartinės medžiagos, naudotos santykinės molekulinės masės pasiskirstymo kalibravimo kreivėje: insulinas, mikopeptidai, glicinas-glicinas-tirozinas-argininas, glicinas-glicinas-glicinas
3 Prietaisai ir įranga
23.2
21.4
22.2
16.1
22.3
20.8
23.9
27,5
Apskritai aminorūgščių dalis „Sustar“ produktuose yra didesnė nei „Zinpro“ produktuose.
8 dalis. Naudojimo poveikis
Įvairių mikroelementų šaltinių poveikis dedeklių vištų produktyvumui ir kiaušinių kokybei vėlyvuoju kiaušinių dėjimo laikotarpiu
Gamybos procesas
Tikslinė chelatų technologija
Šlyties emulsinimo technologija
Slėginio purškimo ir džiovinimo technologija
Šaldymo ir sausinimo technologija
Pažangi aplinkos kontrolės technologija
A priedas: Peptidų santykinės molekulinės masės pasiskirstymo nustatymo metodai
Standarto priėmimas: GB/T 22492-2008
1 bandymo principas:
Jis buvo nustatytas efektyviosios gelio filtracijos chromatografijos metodu. Tai yra, naudojant porėtą užpildą kaip stacionariąją fazę, remiantis mėginio komponentų santykinės molekulinės masės skirtumu, nustatytu ties peptidiniu ryšiu, esant ultravioletinių spindulių absorbcijos bangos ilgiui 220 nm, naudojant specialią duomenų apdorojimo programinę įrangą, skirtą santykinės molekulinės masės pasiskirstymui gelio filtracijos chromatografijos metodu nustatyti (t. y. GPC programinę įrangą), chromatogramos ir jų duomenys buvo apdoroti, apskaičiuoti, siekiant gauti sojos pupelių peptido santykinę molekulinę masę ir pasiskirstymo diapazoną.
2. Reagentai
Eksperimentinis vanduo turi atitikti antrinio vandens specifikaciją GB/T6682, o naudojami reagentai, išskyrus specialias nuostatas, yra analiziškai gryni.
2.1 Reagentai yra acetonitrilas (chromatografiškai grynas), trifluoracto rūgštis (chromatografiškai gryna),
2.2 Standartinės medžiagos, naudotos santykinės molekulinės masės pasiskirstymo kalibravimo kreivėje: insulinas, mikopeptidai, glicinas-glicinas-tirozinas-argininas, glicinas-glicinas-glicinas
3 Prietaisai ir įranga
3.1 Didelio efektyvumo skysčių chromatografas (HPLC): chromatografinė darbo stotis arba integratorius su UV detektoriumi ir GPC duomenų apdorojimo programine įranga.
3.2 Mobiliosios fazės vakuuminio filtravimo ir degazavimo įrenginys.
3.3 Elektroninės svarstyklės: graduota vertė 0,000 1 g.
4 Valdymo žingsniai
4.1 Chromatografinės sąlygos ir sistemos adaptacijos eksperimentai (etaloninės sąlygos)
- 4.1.1 Chromatografinė kolonėlė: TSKgelG2000swxl300 mm × 7,8 mm (vidinis skersmuo) arba kitos to paties tipo gelio kolonėlės, pasižyminčios panašiu našumu, tinkamos baltymams ir peptidams nustatyti.
- 4.1.2 Mobilioji fazė: acetonitrilas + vanduo + trifluoracto rūgštis = 20 + 80 + 0,1.
- 4.1.3 Detekcijos bangos ilgis: 220 nm.
- 4.1.4 Srauto greitis: 0,5 ml/min.
- 4.1.5 Aptikimo laikas: 30 min.
- 4.1.6 Mėginio įpurškimo tūris: 20 μL.
- 4.1.7 Kolonėlės temperatūra: kambario temperatūra.
- 4.1.8 Kad chromatografinė sistema atitiktų aptikimo reikalavimus, buvo nustatyta, kad esant minėtoms chromatografinėms sąlygoms, gelio chromatografinės kolonėlės efektyvumas, t. y. teorinis plokštelių skaičius (N), būtų ne mažesnis kaip 10000, apskaičiuotas pagal tripeptido standarto (glicino-glicino-glicino) smailes.
- 4.2 Santykinės molekulinės masės standartinių kreivių sudarymas
- Aukščiau minėti skirtingos santykinės molekulinės masės peptidų standartiniai tirpalai, kurių masės koncentracija yra 1 mg/ml, buvo paruošti mobiliosios fazės suderinimo būdu, sumaišyti tam tikru santykiu, po to filtruoti per organinės fazės membraną, kurios porų dydis yra 0,2 μm–0,5 μm, ir įpurškiami į mėginį, o tada gautos standartų chromatogramos. Santykinės molekulinės masės kalibravimo kreivės ir jų lygtys buvo gautos braižant santykinės molekulinės masės logaritmą pagal sulaikymo laiką arba tiesinės regresijos metodu.
4.3 Mėginio apdorojimas
Į 10 ml matavimo kolbą tiksliai pasverkite 10 mg mėginio, įpilkite šiek tiek mobiliosios fazės, ultragarsu kratykite 10 min., kad mėginys visiškai ištirptų ir susimaišytų, praskiedžiama mobiliąja faze iki žymės, tada filtruojama per organinės fazės membraną, kurios porų dydis yra 0,2 μm–0,5 μm, ir filtratas analizuojamas pagal A.4.1 punkte nurodytas chromatografines sąlygas.
- 5. Santykinės molekulinės masės pasiskirstymo apskaičiavimas
- Išanalizavus 4.3 punkte paruoštą mėginio tirpalą 4.1 punkte nurodytomis chromatografinėmis sąlygomis, mėginio santykinę molekulinę masę ir jos pasiskirstymo diapazoną galima gauti į kalibravimo kreivę 4.2 įterpiant mėginio chromatografinius duomenis naudojant GPC duomenų apdorojimo programinę įrangą. Skirtingų peptidų santykinių molekulinių masių pasiskirstymą galima apskaičiuoti smailės ploto normalizavimo metodu pagal formulę: X = A / A iš viso × 100
- Formulėje: X - santykinės molekulinės masės peptido masės dalis bendrame peptide mėginyje, %;
- A - Santykinės molekulinės masės peptido smailės plotas;
- Bendras A – kiekvieno santykinės molekulinės masės peptido smailės plotų suma, apskaičiuota su vienu skaičiumi po kablelio.
- 6 Pakartojamumas
- Absoliutus skirtumas tarp dviejų nepriklausomų nustatymų, gautų pakartojamumo sąlygomis, neturi viršyti 15 % dviejų nustatymų aritmetinio vidurkio.
- B priedas: Laisvųjų aminorūgščių nustatymo metodai
- Standarto priėmimas: Q/320205 KAVN05-2016
- 1.2 Reagentai ir medžiagos
- Ledinė acto rūgštis: analiziškai gryna
- Perchloro rūgštis: 0,0500 mol/l
- Indikatorius: 0,1 % krištolo violetinis indikatorius (ledinė acto rūgštis)
- 2. Laisvųjų aminorūgščių nustatymas
Mėginiai buvo džiovinami 80 °C temperatūroje 1 valandą.
Įdėkite mėginį į sausą indą, kad jis natūraliai atvėstų iki kambario temperatūros arba atvėstų iki tinkamos naudoti temperatūros.Į 250 ml sausą kūginę kolbą pasverkite maždaug 0,1 g mėginio (0,001 g tikslumu).Greitai pereikite prie kito žingsnio, kad mėginys nesugertų aplinkos drėgmės.Įpilkite 25 ml ledinės acto rūgšties ir gerai išmaišykite ne ilgiau kaip 5 minutes.Įlašinkite 2 lašus krištolo violetinio indikatoriausTitruokite 0,0500 mol/l (±0,001) standartiniu perchloro rūgšties titravimo tirpalu, kol tirpalo spalva pasikeis iš violetinės į galutinį tašką.
Užrašykite sunaudoto standartinio tirpalo tūrį.
- Tuo pačiu metu atlikite tuščiąjį bandymą.
- 3. Skaičiavimas ir rezultatai
- Laisvųjų aminorūgščių kiekis X reagente išreiškiamas masės dalimi (%) ir apskaičiuojamas pagal formulę: X = C × (V1-V0) × 0,1445/M × 100 %, pagal šią formulę:
- C - Standartinio perchloro rūgšties tirpalo koncentracija moliais litre (mol/L)
- V1 – mėginiams titruoti standartiniu perchloro rūgšties tirpalu naudojamas tūris mililitrais (ml).
- Vo – titravimo tuščiajam mėginiui su standartiniu perchloro rūgšties tirpalu sunaudotas tūris mililitrais (ml);
M – mėginio masė gramais (g).
| 0,1445: Vidutinė aminorūgščių masė, atitinkanti 1,00 ml standartinio perchloro rūgšties tirpalo [c (HClO4) = 1,000 mol / l]. | 4.2.3 Cerio sulfato standartinis titravimo tirpalas: koncentracija c [Ce(SO4)2] = 0,1 mol/l, paruoštas pagal GB/T601. | |
| Standartų priėmimas: Q/70920556 71-2024 | 1. Nustatymo principas (Fe kaip pavyzdys) | Aminorūgščių geležies kompleksai labai mažai tirpsta bevandeniame etanolyje, o laisvųjų metalų jonai tirpsta bevandeniame etanolyje, todėl aminorūgščių geležies kompleksų chelatacijos greičiui nustatyti buvo panaudotas šių dviejų komponentų tirpumo skirtumas bevandeniame etanolyje. |
| Formulėje: V1 - tiriamojo tirpalo titravimui sunaudoto cerio sulfato standartinio tirpalo tūris, ml; | Bevandenis etanolis; visa kita atitinka GB/T 27983-2011 4.5.2 punktą. | 3. Analizės etapai |
| Atlikite du bandymus lygiagrečiai. Pasverkite 0,1 g mėginio, džiovinto 103±2 ℃ temperatūroje 1 valandą, 0,0001 g tikslumu, įpilkite 100 ml bevandenio etanolio, kad ištirptų, perfiltruokite, likučius perfiltruokite ir mažiausiai tris kartus plaukite 100 ml bevandenio etanolio, tada likučius supilkite į 250 ml kūginę kolbą, įpilkite 10 ml sieros rūgšties tirpalo pagal GB/T27983-2011 4.5.3 punktą ir atlikite šiuos veiksmus pagal GB/T27983-2011 4.5.3 punktą „Kaitinkite, kol ištirps, ir leiskite atvėsti“. Tuo pačiu metu atlikite tuščiąjį bandymą. | 4. Bendro geležies kiekio nustatymas | 4.1 Nustatymo principas yra toks pat kaip ir GB/T 21996-2008 4.4.1 punkte. |
4.2. Reagentai ir tirpalai
| 4.2.1 Rūgščių mišinys: Į 700 ml vandens įpilkite 150 ml sieros rūgšties ir 150 ml fosforo rūgšties ir gerai išmaišykite. | 4.2.2 Natrio difenilamino sulfonato indikatorinis tirpalas: 5 g/l, paruoštas pagal GB/T603. | 4.2.3 Cerio sulfato standartinis titravimo tirpalas: koncentracija c [Ce(SO4)2] = 0,1 mol/l, paruoštas pagal GB/T601. | |
| 4.3 Analizės etapai | Atlikite du bandymus lygiagrečiai. Pasverkite 0,1 g mėginio 0,20001 g tikslumu, supilkite jį į 250 ml kūginę kolbą, įpilkite 10 ml mišrios rūgšties, ištirpinus įpilkite 30 ml vandens ir 4 lašus natrio dianilino sulfonato indikatorinio tirpalo, tada atlikite šiuos veiksmus pagal GB/T21996-2008 4.4.2 punktą. Tuo pačiu metu atlikite tuščiąjį bandymą. | 4.4 Rezultatų pateikimas | Bendras aminorūgščių geležies kompleksų geležies kiekis X1, išreikštas geležies masės dalimi, išreikštas procentais, buvo apskaičiuotas pagal (1) formulę: |
| X1 = (V - V0) × C × M × 10⁻³ × 100 | V0 - tuščiojo tirpalo titravimui sunaudotas cerio sulfato standartinis tirpalas, ml; | V0 - tuščiojo tirpalo titravimui sunaudotas cerio sulfato standartinis tirpalas, ml; | C - Faktinė cerio sulfato standartinio tirpalo koncentracija, mol/l5. Geležies kiekio chelatuose apskaičiavimasGeležies kiekis chelate X2, išreikštas geležies masės dalimi, išreikštas procentais, buvo apskaičiuotas pagal formulę: x2 = ((V1-V2) × C × 0,05585)/m1 × 100 |
| Formulėje: V1 - tiriamojo tirpalo titravimui sunaudoto cerio sulfato standartinio tirpalo tūris, ml; | V2 – tuščiojo tirpalo titravimui sunaudotas standartinis cerio sulfato tirpalas, ml;nom1 – mėginio masė, g. Lygiagrečių nustatymų rezultatų aritmetinis vidurkis laikomas nustatymo rezultatais, o absoliutus lygiagrečių nustatymų rezultatų skirtumas negali būti didesnis kaip 0,3 %. | 0,05585 – geležies(II) masė, išreikšta gramais, atitinkanti 1,00 ml cerio sulfato standartinio tirpalo C[Ce(SO4)2.4H20] = 1,000 mol/l.nom1 – mėginio masė, g. Lygiagrečių nustatymų rezultatų aritmetinis vidurkis laikomas nustatymo rezultatais, o absoliutus lygiagrečių nustatymų rezultatų skirtumas negali būti didesnis kaip 0,3 %. | 6. Chelatų susidarymo greičio apskaičiavimasChelatacijos greitis X3, vertė išreikšta %, X3 = X2/X1 × 100C priedas: Zinpro chelatacijos greičio nustatymo metodai |
Standarto priėmimas: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Reagentai ir medžiagos
a) Ledinė acto rūgštis: analiziškai gryna; b) Perchloro rūgštis: 0,0500 mol/l; c) Indikatorius: 0,1 % kristalinio violetinio indikatoriaus (ledinė acto rūgštis)
2. Laisvųjų aminorūgščių nustatymas
2.1 Mėginiai buvo džiovinami 80 °C temperatūroje 1 valandą.
2.2 Įdėkite mėginį į sausą indą, kad jis natūraliai atvėstų iki kambario temperatūros arba iki tinkamos naudoti temperatūros.
2.3 Į 250 ml sausą kūginę kolbą pasverkite maždaug 0,1 g mėginio (0,001 g tikslumu).
2.4 Greitai pereikite prie kito žingsnio, kad mėginys nesugertų aplinkos drėgmės.
2.5 Įpilkite 25 ml ledinės acto rūgšties ir gerai išmaišykite ne ilgiau kaip 5 minutes.
2.6 Įlašinkite 2 lašus krištolo violetinio indikatoriaus.
2.7 Titruokite 0,0500 mol/l (±0,001) standartiniu perchloro rūgšties titravimo tirpalu, kol tirpalo spalva pasikeis iš violetinės į žalią 15 sekundžių, nekeičiant spalvos kaip galutinio taško.
2.8 Užrašykite sunaudoto standartinio tirpalo tūrį.
2.9 Tuo pačiu metu atlikite tuščiąjį bandymą.
- 3. Skaičiavimas ir rezultatai
- Katalonų k.
- Physicochemical parameters
V1 – mėginiams titruoti standartiniu perchloro rūgšties tirpalu naudojamas tūris mililitrais (ml).
Vo – titravimo tuščiajam mėginiui su standartiniu perchloro rūgšties tirpalu sunaudotas tūris mililitrais (ml);
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Adresas: Qingpu kelias Nr. 147, Shouan miestas, Pujiang apskritis, Čengdu miestas, Sičuano provincija, Kinija
Telefonas: 86-18880477902
Produktai
Neorganiniai mikroelementai
- Organiniai mikroelementai
- suahilių k.
- Individualus aptarnavimas
- Greitosios nuorodos
Įmonės profilis
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Gudžaratų | Spustelėkite norėdami gauti užklausą | © Autorių teisės - 2010–2025: Visos teisės saugomos. | Svetainės planas POPULIARIAUSI PAIEŠKA Telefonas |
| Tel. | 86-18880477902 | Javiečių | El. paštas |
| 8618880477902 | kinų | prancūzų | |
| Bird | kinų | prancūzų | Vokiečių ispanų |
| Aquatic animals | japonų | Korėjiečių | arabų graikų |
| turkų | italų | ||
| Ruminant animal g/head day | January 0.75 | Indoneziečių k. afrikanų k. Švedų |
lenkų
- Baskų
- Katalonų k.
- Physicochemical parameters
Hindi
Lao
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Šona
bulgarų
- Cebuano
- This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
- The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
- Kroatų
Olandų
| Application object | urdu k. Vietnamiečių | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Gudžaratų | Haičio | Hausų | Kinjarvanda Hmongas vengrų |
| Piglets and fattening pigs | Igbo | Javiečių | Kanadų Khmerų kurdų |
| Kirgizų | Lotynų kalba | ||
| Bird | 300～400 | 45～60 | makedonų Malajų malajalių |
| Aquatic animals | 200～300 | 30～45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
Norvegų
- puštūnų
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
Serbų
Sesotų
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Šona
sindų k.
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
suahilių k.
Tadžikų
tamilų
telugų
Tailando
| Application object | urdu k. Vietnamiečių | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Jidiš | Jorubų | Zulų | Kinjarvanda Orijų Turkmėnų |
| uigūrų | 250～400 | 37.5～60 | 1. Improving the immunity of piglets, reducing diarrhea and mortality; 2. Improving palatability, increasing feed intake, increasing growth rate and improving feed conversion; 3. Make the pig coat bright and improve the carcass quality and meat quality. |
| Bird | 300～400 | 45～60 | 1. Improve feather glossiness; 2. improve the laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, and strengthen the coloring ability of egg yolk; 3. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 4. Improve feed conversion and increase growth rate. |
| Aquatic animals | January 300 | 45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
| Ruminant animal g/head day | 2.4 | 1. Improve milk yield, prevent mastitis and foof rot, and reduce somatic cell content in milk; 2. Promote growth, improve feed conversion and improve meat quality. |
4. Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Product Name: Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
a) Mn: ≥ 10.0%
b) Total amino acids: ≥ 19.5%
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
n=0, 1,2,...indicates chelated manganese for dipeptides, tripeptides, and tetrapeptides
Characteristics of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
The product can improve the growth rate, improve feed conversion and health status significantly; and improve the laying rate, hatching rate and healthy chick rate of breeding poultry obviously;
Manganese is necessary for bone growth and connective tissue maintenance. It is closely related to many enzymes; and participates in carbohydrate, fat and protein metabolism, reproduction and immune response.
Usage and Efficacy of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Breeding pig | 200～300 | 30～45 | 1. Promote the normal development of sexual organs and improve sperm motility; 2. Improve the reproductive capacity of breeding pigs and reduce reproductive obstacles. |
| Piglets and fattening pigs | 100～250 | 15～37.5 | 1. It is beneficial to improve immune functions, and improve anti-stress ability and disease resistance; 2. Promote growth and improve feed conversion significantly; 3. Improve meat color and quality, and improve lean meat percentage. |
| Bird | 250～350 | 37.5～52.5 | 1. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 2. Improve laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, improve eggshell quality and reduce shell breaking rate; 3. Promote bone growth and reduce the incidence of leg diseases. |
| Aquatic animals | 100～200 | 15～30 | 1. Promote growth and improve its anti-stress ability and disease resistance; 2. Improve sperm motility and hatching rate of fertilized eggs. |
| Ruminant animal g/head day | Cattle 1.25 | 1. Prevent fatty acid synthesis disorder and bone tissue damage; 2. Improve reproductive capacity, prevent abortion and postpartum paralysis of female animals, reduce the mortality of calves and lambs, and increase the newborn weight of young animals. | |
| Goat 0.25 |
Part 6 FAB of Small Peptide-mineral Chelates
| S/N | F: Functional attributes | A: Competitive differences | B: Benefits brought by competitive differences to users |
| 1.52 | Selectivity control of raw materials | Select pure plant enzymatic hydrolysis of small peptides | High biological safety, avoiding cannibalism |
| 2 | Directional digestion technology for double protein biological enzyme | High proportion of small molecular peptides | More "targets", which are not easy to saturation, with high biological activity and better stability |
| 3 | Advanced pressure spray & drying technology | Granular product, with uniform particle size, better fluidity, not easy to absorb moisture | Ensure easy to use, more uniform mixing in complete feed |
| Low water content (≤ 5%), which greatly reduces the influence caused by vitamins and enzyme preparations | Improve the stability of feed products | ||
| 4 | Advanced production control technology | Totally enclosed process, high degree of automatic control | Safe and stable quality |
| 5 | Advanced quality control technology | Establish and improve scientific and advanced analytical methods and control means for detecting factors affecting product quality, such as acid-soluble protein, molecular weight distribution, amino acids and chelating rate | Ensure quality, ensure efficiency and improve efficiency |
Part 7 Competitor Comparison
Standard VS Standard
Comparison of peptide distribution and chelation rate of products
| Sustar's products | Proportion of small peptides（180-500） | Zinpro's products | Proportion of small peptides（180-500） |
| AA-Cu | ≥74% | AVAILA-Cu | 78% |
| AA-Fe | ≥48% | AVAILA-Fe | 59% |
| AA-Mn | ≥33% | AVAILA-Mn | 53% |
| AA-Zn | ≥37% | AVAILA-Zn | 56% |
| Sustar's products | Chelation rate | Zinpro's products | Chelation rate |
| AA-Cu | 94.8% | AVAILA-Cu | 94.8% |
| AA-Fe | 95.3% | AVAILA-Fe | 93.5% |
| AA-Mn | 94.6% | AVAILA-Mn | 94.6% |
| AA-Zn | 97.7% | AVAILA-Zn | 90.6% |
The ratio of small peptides of Sustar is slightly lower than that of Zinpro, and the chelation rate of Sustar's products is slightly higher than that of Zinpro's products.
Comparison of the content of 17 amino acids in different products
| Name of amino acids | Sustar's Copper Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA copper | Sustar's Ferrous Amino Acid C helate Feed Grade | Zinpro's AVAILA iron | Sustar's Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA manganese | Sustar's Zinc Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA zinc |
| aspartic acid (%) | 1.88 | 0.72 | 1.50 | 0.56 | 1.78 | 1.47 | 1.80 | 2.09 |
| glutamic acid (%) | 4.08 | 6.03 | 4.23 | 5.52 | 4.22 | 5.01 | 4.35 | 3.19 |
| Serine (%) | 0.86 | 0.41 | 1.08 | 0.19 | 1.05 | 0.91 | 1.03 | 2.81 |
| Histidine (%) | 0.56 | 0.00 | 0.68 | 0.13 | 0.64 | 0.42 | 0.61 | 0.00 |
| Glycine (%) | 1.96 | 4.07 | 1.34 | 2.49 | 1.21 | 0.55 | 1.32 | 2.69 |
| Threonine (%) | 0.81 | 0.00 | 1.16 | 0.00 | 0.88 | 0.59 | 1.24 | 1.11 |
| Arginine (%) | 1.05 | 0.78 | 1.05 | 0.29 | 1.43 | 0.54 | 1.20 | 1.89 |
| Alanine (%) | 2.85 | 1.52 | 2.33 | 0.93 | 2.40 | 1.74 | 2.42 | 1.68 |
| Tyrosinase (%) | 0.45 | 0.29 | 0.47 | 0.28 | 0.58 | 0.65 | 0.60 | 0.66 |
| Cystinol (%) | 0.00 | 0.00 | 0.09 | 0.00 | 0.11 | 0.00 | 0.09 | 0.00 |
| Valine (%) | 1.45 | 1.14 | 1.31 | 0.42 | 1.20 | 1.03 | 1.32 | 2.62 |
| Methionine (%) | 0.35 | 0.27 | 0.72 | 0.65 | 0.67 | 0.43 | January 0.75 | 0.44 |
| Phenylalanine (%) | 0.79 | 0.41 | 0.82 | 0.56 | 0.70 | 1.22 | 0.86 | 1.37 |
| Isoleucine (%) | 0.87 | 0.55 | 0.83 | 0.33 | 0.86 | 0.83 | 0.87 | 1.32 |
| Leucine (%) | 2.16 | 0.90 | 2.00 | 1.43 | 1.84 | 3.29 | 2.19 | 2.20 |
| Lysine (%) | 0.67 | 2.67 | 0.62 | 1.65 | 0.81 | 0.29 | 0.79 | 0.62 |
| Proline (%) | 2.43 | 1.65 | 1.98 | 0.73 | 1.88 | 1.81 | 2.43 | 2.78 |
| Total amino acids (%) | 23.2 | 21.4 | 22.2 | 16.1 | 22.3 | 20.8 | 23.9 | 27.5 |
Overall, the proportion of amino acids in Sustar's products is higher than that in Zinpro's products.
Part 8 Effects of use
Effects of different sources of trace minerals on the production performance and egg quality of laying hens in the late laying period
Production Process
- Targeted chelation technology
- Shear emulsification technology
- Pressure spray & drying technology
- Refrigeration & dehumidification technology
- Advanced environmental control technology
Appendix A: Methods for the Determination of relative molecular mass distribution of peptides
Adoption of standard: GB/T 22492-2008
1 Test Principle:
It was determined by high performance gel filtration chromatography. That is to say, using porous filler as stationary phase, based on the difference in the relative molecular mass size of the sample components for separation, detected at the peptide bond of the ultraviolet absorption wavelength of 220nm, using the dedicated data processing software for the determination of relative molecular mass distribution by gel filtration chromatography (i.e., the GPC software), the chromatograms and their data were processed, calculated to get the size of the relative molecular mass of the soybean peptide and the distribution range.
2. Reagents
The experimental water should meet the specification of secondary water in GB/T6682, the use of reagents, except for special provisions, are analytically pure.
2.1 Reagents include acetonitrile (chromatographically pure), trifluoroacetic acid (chromatographically pure),
2.2 Standard substances used in the calibration curve of relative molecular mass distribution: insulin, mycopeptides, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine
3 Instrument and equipment
3.1 High Performance Liquid Chromatograph (HPLC): a chromatographic workstation or integrator with a UV detector and GPC data processing software.
3.2 Mobile phase vacuum filtration and degassing unit.
3.3 Electronic balance: graduated value 0.000 1g.
4 Operating steps
4.1 Chromatographic conditions and system adaptation experiments (reference conditions)
4.1.1 Chromatographic column: TSKgelG2000swxl300 mm×7.8 mm (inner diameter) or other gel columns of the same type with similar performance suitable for the determination of proteins and peptides.
4.1.2 Mobile phase: Acetonitrile + water + trifluoroacetic acid = 20 + 80 + 0.1.
4.1.3 Detection wavelength: 220 nm.
4.1.4 Flow rate: 0.5 mL/min.
4.1.5 Detection time: 30 min.
4.1.6 Sample injection volume: 20μL.
4.1.7 Column temperature: room temperature.
4.1.8 In order to make the chromatographic system meet the detection requirements, it was stipulated that under the above chromatographic conditions, the gel chromatographic column efficiency, i.e., the theoretical number of plates (N), was not less than 10000 calculated on the basis of the peaks of the tripeptide standard (Glycine-Glycine-Glycine).
4.2 Production of relative molecular mass standard curves
The above different relative molecular mass peptide standard solutions with a mass concentration of 1 mg / mL were prepared by mobile phase matching, mixed in a certain proportion, and then filtered through an organic phase membrane with the pore size of 0.2 μm~0.5 μm and injected into the sample, and then the chromatograms of the standards were obtained. Relative molecular mass calibration curves and their equations were obtained by plotting the logarithm of relative molecular mass against retention time or by linear regression.
4.3 Sample treatment
Accurately weigh 10mg of sample in a 10mL volumetric flask, add a little mobile phase, ultrasonic shaking for 10min, so that the sample is fully dissolved and mixed, diluted with mobile phase to the scale, and then filtered through an organic phase membrane with a pore size of 0.2μm~0.5μm, and the filtrate was analyzed according to the chromatographic conditions in A.4.1.
5. Calculation of relative molecular mass distribution
After analyzing the sample solution prepared in 4.3 under the chromatographic conditions of 4.1, the relative molecular mass of the sample and its distribution range can be obtained by substituting the chromatographic data of the sample into the calibration curve 4.2 with GPC data processing software. The distribution of the relative molecular masses of the different peptides can be calculated by the peak area normalization method, according to the formula: X=A/A total×100
In the formula: X - The mass fraction of a relative molecular mass peptide in the total peptide in the sample, %;
A - Peak area of a relative molecular mass peptide;
Total A - the sum of the peak areas of each relative molecular mass peptide, calculated to one decimal place.
6 Repeatability
The absolute difference between two independent determinations obtained under conditions of repeatability shall not exceed 15% of the arithmetic mean of the two determinations.
Appendix B: Methods for the Determination of Free Amino Acids
Adoption of standard: Q/320205 KAVN05-2016
1.2 Reagents and materials
Glacial acetic acid: analytically pure
Perchloric acid: 0.0500 mol/L
Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
The samples were dried at 80°C for 1 hour.
Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask.
Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture
Add 25 mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5 min.
Add 2 drops of crystal violet indicator
Titrate with 0.0500 mol / L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to the end point.
Record the volume of standard solution consumed.
Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%) and is calculated according to the formula: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%, in tne formula:
C - Concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445: Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
Appendix C: Methods for the Determination of Sustar's chelation rate
Adoption of standards: Q/70920556 71-2024
1. Determination principle (Fe as an example)
Amino acid iron complexes have very low solubility in anhydrous ethanol and free metal ions are soluble in anhydrous ethanol, the difference in solubility between the two in anhydrous ethanol was utilized to determine the chelation rate of amino acid iron complexes.
2. Reagents & Solutions
Anhydrous ethanol; the rest is the same as clause 4.5.2 in GB/T 27983-2011.
3. Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of the sample dried at 103±2℃ for 1 hour, accurate to 0.0001g, add 100mL of anhydrous ethanol to dissolve, filter, filter residue washed with 100mL of anhydrous ethanol for at least three times, then transfer the residue into a 250mL conical flask, add 10mL of sulfuric acid solution according to clause 4.5.3 in GB/T27983-2011, and then perform the following steps according to clause 4.5.3 “Heat to dissolve and then let cool” in GB/T27983-2011. Carry out the blank test at the same time.
4. Determination of total iron content
4.1 The principle of determination is the same as clause 4.4.1 in GB/T 21996-2008.
4.2. Reagents & Solutions
4.2.1 Mixed acid: Add 150mL of sulfuric acid and 150mL of phosphoric acid to 700mL of water and mix well.
4.2.2 Sodium diphenylamine sulfonate indicator solution: 5g/L, prepared according to GB/T603.
4.2.3 Cerium sulfate standard titration solution: concentration c [Ce (SO4) 2] = 0.1 mol/L, prepared according to GB/T601.
4.3 Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of sample, accurate to 020001g, place in a 250mL conical flask, add 10mL of mixed acid, after dissolution, add 30ml of water and 4 drops of sodium dianiline sulfonate indicator solution, and then perform the following steps according to clause 4.4.2 in GB/T21996-2008. Carry out the blank test at the same time.
4.4 Representation of results
The total iron content X1 of the amino acid iron complexes in terms of mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to formula (1):
X1=(V-V0)×C×M×10-3×100
In the formula: V - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V0 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L
5. Calculation of iron content in chelates
The iron content X2 in the chelate in terms of the mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to the formula: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100
In the formula: V1 - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V2 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L;
0.05585 - mass of ferrous iron expressed in grams equivalent to 1.00 mL of cerium sulfate standard solution C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 mol/L.
m1-Mass of the sample, g. Take the arithmetic mean of the parallel determination results as the determination results, and the absolute difference of the parallel determination results is not more than 0.3%.
6. Calculation of chelation rate
Chelation rate X3, the value expressed in %, X3 = X2/X1 × 100
Appendix C: Methods for the Determination of Zinpro's chelation rate
Adoption of standard: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Reagents and materials
a) Glacial acetic acid: analytically pure; b) Perchloric acid: 0.0500mol/L; c) Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
2.1 The samples were dried at 80°C for 1 hour.
2.2 Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
2.3 Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask
2.4 Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture.
2.5 Add 25mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5min.
2.6 Add 2 drops of crystal violet indicator.
2.7 Titrate with 0.0500mol/L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to green for 15s without changing color as the end point.
2.8 Record the volume of standard solution consumed.
2.9 Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%), calculated according to formula (1): X=C×(V1-V0) ×0.1445/M×100%...... .......(1)
In the formula: C - concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445 - Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
4. Calculation of chelation rate
The chelation rate of the sample is expressed as mass fraction (%), calculated according to formula (2): chelation rate = (total amino acid content - free amino acid content)/total amino acid content×100%.
Post time: Sep-17-2025
